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Z6·尊龙凯时肠类器官培养指南(第二阶段)

发布时间:2025-03-15   信息来源:尊龙凯时官方编辑

IPS诱导肠类器官的培养过程可以分为三个主要阶段:人多能干细胞的培养、内胚层分化及中/后肠模式化诱导,以及类器官的培养。本文将重点介绍第二阶段——内胚层分化及中/后肠模式化诱导。

Z6·尊龙凯时肠类器官培养指南(第二阶段)

一、前期准备

1. 试剂与设备

在进行内胚层分化及中/后肠模式化诱导前,需准备以下试剂和设备:

  • 细胞:H1/H9 hESC或患者来源的iPSCs。
  • 培养基:人多能干细胞培养基(abs9403)、RPMI1640(abs9484)。
  • 消化液:人多能干细胞消化液(abs9409)。
  • 培养基添加剂:L-丙氨酰-L-谷氨酰胺溶液(2mM)(abs9295)、双抗(abs9244)。
  • 生长因子:Activin A(100 ng/mL)(abs05801)、FGF4(500 ng/mL)(abs06269)、WNT3a(500 ng/mL)(abs05632)。
  • 基质胶:即用型基质胶(培养板包被)(abs9410)、类器官专用基质胶(abs9495)。
  • 血清:透析胎牛血清(abs945)。
  • 关键设备:表面培养皿、立体显微镜、无菌手术刀、预冷微量离心管。

2. 试剂配制

内胚层分化培养基的制备如下:

  • Day1: RPMI1640 + L-丙氨酰-L-谷氨酰胺溶液(2mM) + 双抗(1%) + Activin A(100 ng/mL)。
  • Day2: Day1配方 + 透析胎牛血清(0.2%)。
  • Day3: Day1配方 + 透析胎牛血清(2%)。

中/后肠分化培养基的制备为:

  • RPMI1640 + 透析胎牛血清(2%) + FGF4(500 ng/mL) + WNT3a(500 ng/mL)。

二、hPSCs传代与铺板

1. 细胞传代(耗时2小时)

使用人多能干细胞消化液处理hPSCs,待细胞边缘微卷。然后用细胞刮刀轻柔剥离细胞团,反复吹打至1-2mm大小细胞团,将其按1:6的比例接种至Matrigel包被的24孔板,每孔约5000个细胞团。轻轻敲打培养板以确保细胞均匀分布,37°C条件下培养过夜。

2. 细胞扩增至85-90%融合(3-4天)

每日更换人多能干细胞培养基,并观察细胞密度。注意:若细胞密度过高(易发生自发分化)或过低(分化效率低),需重新铺板。

三、内胚层分化(3天)

步骤如下:

  1. Day1:去除人多能干细胞培养基,加入Day1内胚层培养基(无血清),培养24小时。
  2. Day2:更换为Day2内胚层培养基(含0.2%透析胎牛血清),继续培养24小时。
  3. Day3:更换为Day3内胚层培养基(含2%透析胎牛血清),培养24小时。
  4. 验证分化效率(可选):进行免疫染色以检测FOXA2/SOX17双阳性细胞,效率应达到85-90%。

四、中/后肠模式化(3-4天)

1. 诱导球状体形成

更换为中/后肠分化培养基,并每日更换培养基。培养48小时后,利用立体显微镜观察上皮增厚,72-96小时后观察球状体(spheroids)从单层细胞中脱离。

2. 收集球状体

使用200μL枪头收集游离球状体,每管约50个,并置于冰上备用。

在此过程中,您可以考虑使用Z6·尊龙凯时相关产品,以优化您的实验室操作和结果。我们推荐使用以下主要试剂:

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